2 干预措施
1) 治疗组:①术中:伤口先用生理盐水冲洗(必要时先清创),安多福消毒,再根据创面大小(即先试着将管缠上医用泡沫后放置在创面内)决定所需医用泡沫的大小及侧孔引流管的所需侧孔的长度。从管的末端开始剪侧孔,每孔间距约5 mm, 孔直径以不超过5mm为佳,相邻的孔不要在管的同一纵轴方向上,理想的侧孔应排列成螺旋形。剪完侧孔后用医用泡沫包裹,包裹完毕后剪除多余的泡沫。然后将未包裹医用泡沫的裸端置于创面长轴的边缘,再将包裹上泡沫的吸引管由外向内呈同心圆形盘置在创面内;然后用粘贴薄膜封闭引流管。由于创面都为污染或者感染的创面,所以所有病人引流管都是经创面原位引出。
② 术后:第一次清创术后用W-Ⅱ型负压引流瓶接引流管进行负压抽吸。第二天以后使用墙壁式中心负压吸引。术后需观察的是负压是否切实可靠、负压装置是否需要更换。负压观察的指标是创面上方粘贴薄膜的形状和瓶体的形状:粘贴薄膜凹陷并紧贴创面内医用泡沫上;如果粘贴薄膜不凹陷、没有紧贴创面内医用泡沫,则需怀疑粘贴薄膜是否已松脱或者破损。如果粘贴薄膜已松脱或者破损,则需要重新换药、更换负压引流材料。通常情况下,3-5天换药一次、更换负压引流材料,根据肉芽生长情况及创面情况来调整引流范围及医用泡沫大小或者考虑做下一步转移皮瓣或者直接缝合等处理。
2 )对照组:若创面污浊,坏死组织较多,先用3%,再用安多福,然后用生理盐水依次清洗创面及其周围皮肤,使用藻酸盐外敷后再包扎创面。
3 渗液收集
通过收集第1、3、7天放置在病人PU部位24小时的藻酸盐或者海绵来提取伤口渗液。在4℃以2500转/分离心5分钟后收集浮在表面的溶液,过滤除菌后贮存于-80℃备用。
四 细胞培养干预
取传代为第四代的人皮肤成纤维细胞,用0.25%胰蛋白酶消化单层培养细胞,用含10%胎牛血清的RPMI1640培养液配成单个细胞悬液,以每孔103~104个细胞接种于96孔培养板中,每孔体积180μl。将培养板移入CO2孵箱中,在37℃、5%及 CO2饱和湿度条件下,培养2天。将过滤后的不同时期的创面渗液10μl加入,培养24h后,每孔加入MTT溶液(5mg/ml)20μl,37 ℃,继续孵育4h,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液。每孔加入150μl DMSO,振荡10min,使结晶物充分溶解。选择490nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。
五 统计学分析
数据应用SPSS13.0软件处理,计量资料以均数±标准差( ±S)表示。
结果
1 两组病例入院时的一般情况:
本研究中两组病例间年龄、性别、入院前的PU病程、PU的PUSH TOOL 评分、Braden’s 评分、PU评估分期情况对应比较均无统计学意义(P>0.05),两组病例在一般情况上具有可比性(见表 1)。两组PU评估均为黑期和黄期,无红期和粉期病例。
表 1两组病例一般情况
组别 |
例数(例) |
年龄(岁) |
性别(男/女) |
部位(骶部/股骨大转子) |
PU病程(天) |
PUSH TOOL评分 |
Braden’s评分 |
|
对照组 |
10 |
68.80±13.30 |
7/3 |
6/4 |
70.4±15.2 |
12.60±3.24 |
12.80±2.20 |
|
实验组 |
8 |
71.25±20.12 |
6/2 |
5/3 |
62.5±10.3 |
13.38±1.92 |
12.50±1.69 |
注:两组间的各项比较P均>0.05
如果本文对您有帮助,欢迎使用左边赞赏~
¥赞赏
评论